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dc.contributor.advisor1Domingos, Marisa-
dc.contributor.advisor1Latteshttp://lattes.cnpq.br/2579096687632978pt_BR
dc.contributor.referee1Dalvi, Valdnéa Casagrande-
dc.contributor.referee1Latteshttp://lattes.cnpq.br/9325662970222296pt_BR
dc.contributor.referee2Costa, Alan Carlos-
dc.contributor.referee2Latteshttp://lattes.cnpq.br/2154584522625285pt_BR
dc.contributor.referee3Marques, Renata Pereira-
dc.contributor.referee3Latteshttp://lattes.cnpq.br/2707820212520956pt_BR
dc.contributor.referee4Müller, Caroline-
dc.contributor.referee4Latteshttp://lattes.cnpq.br/1280369660687848pt_BR
dc.contributor.referee5Domingos, Marisa-
dc.contributor.referee5Latteshttp://lattes.cnpq.br/2579096687632978pt_BR
dc.creatorLima, Dêmily Andrômeda-
dc.creator.Latteshttp://lattes.cnpq.br/2587081880120826pt_BR
dc.date.accessioned2017-09-28T17:36:54Z-
dc.date.available2017-09-28T17:36:54Z-
dc.date.issued2016-08-23-
dc.identifier.citationLIMA, Dêmily Andrômeda. Alterações morfoanatômicas e fisiológicas em plantas não alvo de Bauhinia variegata L. como indicadoras da ação do herbicida diurom. 2016. 29 f. Dissertação (Mestrado em Agroquímica)— Instituto Federal Goiano, Campus Rio Verde GO, 2016.pt_BR
dc.identifier.urihttps://repositorio.ifgoiano.edu.br/handle/prefix/14-
dc.description.abstractThe wide use of diuron herbicide in sugarcane lands has compromised surrounding uncultivated areas, which may result in acute and/or chronic damage in non-target plants, among other toxic effects in the environment. Sensitive plant species to anthropogenic stressors have been used to delimit and predict effects of toxic substances in the environment and in non-target plants, a method called environmental biomonitoring. Thus, the aim of this research was to evaluate physiological and morphoanatomic responses in Bauhinia variegata L. plants to different doses of diuron to characterize its bioindicator potential for indicating its occurrence in phytotoxic levels in the environment. Seedlings of B. variegata 90 day-old were transplanted into 10 liter pots. After acclimatization period (about 30 d) treatments consisting of diuron doses were applied: 0 (control), 400, 800, 1600 and 2400 g ai ha-1. The experiment was conducted in a randomized block design, in a 5 x 5 factorial scheme with five doses of diuron and five evaluation times and five replicates per treatment. Gas exchange, chlorophyll a fluorescence, anatomy and morphology were evaluated. The herbicide diuron changed starkly the physiological and anatomical characteristic of plants from the lowest dose applied. The effects observed, such as the visible symptoms and changes in the ETR, YII and Fv/Fm, were considered adequate biomarkers of diuron action on non-target plants. Therefore, we concluded that B. variegata is sensitive to diuron herbicide and has potential as bioindicators.pt_BR
dc.description.resumoA ampla utilização do herbicida diurom na cultura de cana-de-açúcar tem comprometido áreas não cultivadas, e pode culminar em danos severos ao ambiente, como toxicidade aguda e/ou crônica às plantas não alvo. Espécies vegetais sensíveis a estresses antrópicos têm sido utilizadas para delimitar e prever efeitos de substâncias tóxicas no meio ambiente e em plantas não alvo, método denominado biomonitoramento ambiental. Com isso, o objetivo desta pesquisa foi avaliar respostas morfoanatômicas e fisiológicas em plantas de Bauhinia variegata L. a diferentes doses do diurom, buscando caracterizar seu potencial bioindicador da toxidez deste herbicida. Mudas de B. variegata com 90 dias de idade foram transplantadas para vasos de 10 L. Após um período de aclimatação (aproximadamente 30 dias), foram aplicados os tratamentos consistindo das seguintes doses de diurom: 0 (controle), 400, 800, 1.600 e 2.400 g i.a ha-1. O experimento foi conduzido em delineamento de blocos ao acaso, em esquema fatorial 5 x 5, sendo cinco doses de diurom e cinco tempos de avaliação e cinco repetições por tratamento. Foram avaliadas morfologia e anatomia foliar, trocas gasosas e fluorescência da clorofila a. O herbicida diurom alterou de forma severa, desde a menor dose aplicada, as características morfoanatômicas e fisiológicas das plantas. Os efeitos observados, como os sintomas visíveis, alterações na distribuição das ceras no limbo foliar e danos no parênquima clorofiliano podem ser considerados biomarcadores adicionais da ação do diurom. Já as alterações na ETR, YII e Fv/Fm são bons biomarcadores da ação do herbicida em plantas não alvo, visto que são medidas não destrutivas.pt_BR
dc.description.provenanceSubmitted by Daniel Rodrigues Guimarães (daniel.guimaraes@ifgoiano.edu.br) on 2017-09-28T17:36:54Z No. of bitstreams: 1 LIMA,_Demily _Androneda_Dissertacao.pdf: 2245315 bytes, checksum: c639dfb26fc39be08ade5700ab2df175 (MD5)en
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dc.description.sponsorshipInstituto Federal Goianopt_BR
dc.languageporpt_BR
dc.publisherInstituto Federal Goianopt_BR
dc.publisher.countryBrasilpt_BR
dc.publisher.departmentCampus Rio Verdept_BR
dc.publisher.programPrograma de Pós-Graduação em Agroquímicapt_BR
dc.publisher.initialsIF Goianopt_BR
dc.relation.referencesAbdel-Hameed, U.K., El-Magly, U.I., Ishak, I.F., Tantawy, M.E., 2013. A contribution to the specification of Caesalpinioideae (L) based on morphological and molecular criteria. Beni-Suef Univ. J. Basic and Appl. Sci. 2, 120-127. Ali, H.R., Arifin, M.M., Sheikn, M.A., Shazili, N.A.M., Bakari, S.S., Bachok, Z., 2014. Contamination of diuron in coastal waters around Malaysian Peninsular. Mar. Pollut. Bull. 85, 287-291. Alves, R.M., Inacio, E.M., Monquero, P.A., Meneghin, S.P., Hidrata, A.C.S., 2014. Leaf-surface characterization and the effects of the herbicide saflufenacil on the leaves of weeds. Rev. Bras. Ciênc. Agr. 9, 550-555. Andréa, M.M., 2008. Bioindicadores ecotoxicológicos de agrotóxicos. Comunicado técnico: Instituto Biológico 83, 1-8. Anjos, L., Oliva, M.A., Kuki, K.N., 2012. Fluorescence imaging of light acclimation of Brazilian atlantic forest tree species. Photosynthetica 50, 95-108. Ashraf, M., Harris, P.J.C., 2013. Photosynthesis under stressful environments: An overview. Photosynthetica 51, 163-190. Baker, N.R., Rosenqvist, E., 2004. Applications of chlorophyll fluorescence can improve crop production strategies: an examination of future possibilities. J. Exp. Bot. 55, 1607-1621. Baroli, I., Niyogi, K.K., 2000. Molecular genetics of xanthophyll-dependent photoprotection in green algae and plants. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. 355, 1385- 1394. Barroso, A.A.M., Galeano, E., Albrecht, A.J.P., Reis, F.C., Victoria Filho, R., 2015. Does Sourgrass leaf anatomy influence glyphosate resistance? Comun. Sci. 6, 445-453. Belapart, D., Castro, E.B., Girotto, M., Nascimento, R.F., Junior, G.J.P., Simões, P.S., 2013. Avaliação da taxa de transporte de elétrons de misturas de herbicidas no controle de B. decumbens em pós-emergência. Rev. Cient. Elet. Agron. 24, 79-90. 25 Bell, A.M., Duke, N.C., 2005. Effects of photosystem II inhibiting herbicides on mangroves – preliminary toxicology trials. Mar. Pollut. Bull. 51, 297-307. Beuchle, R., Grecchi, R.C., Shimabukuro, Y.E., Seliger, R., Eva, H.D., Sano, E., Achard, F., 2015. Land cover changes in the Brazilian Cerrado and Caatinga biomes from 1990 to 2010 based on a systematic remote sensing sampling approach. Appl. Geogr. 58, 116-127. Bilger, W., Schereiber, U., Bock, M., 1995. Determination of the quantum efficiency of photosystem II and of non-photochemical quenching of chlorophyll fluorescence in the field. Oecologia 102, 425-432. Boutin, C., Aya, K.L., Carpenter, D., Thomas, P.J., Rowland, O., 2012. Phytotoxicity testing for herbicide regulation: Shortcomings in relation to biodiversity and ecosystem services in agrarian systems. Sci. Total Environ. 415, 79-92. Brasil. Ministério da Saúde. Portaria n. 518 de 25 de março de 2004. Procedimentos e responsabilidades relativos ao controle e vigilância da qualidade da água para consumo humano e seu padrão de potabilidade. Disponível em: <http://bvsms.saude.gov.br/bvs/publicacoes/portaria_518_2004.pdf>. Acesso em 05 de out. 2015. Brasil. Lei n. 12.651 de 25 de maio de 2012. Proteção de vegetação nativa. Novo Código Florestal 2004. Disponível em: <http://www.planalto.gov.br/ccivil_03/_ato2011-2014/2012/lei/L12651compilado.htm> Acesso em 14 de março 2016. Brasil. Ministério do Meio Ambiente. Lei 3.200/15 de 24 de abril de 2016. Defensivos agrícolas. Disponível em: <http://www2.camara.leg.br/camaranoticias/noticias/meioambiente/ 507918-projeto-regulamenta-uso-de-defensivos-agricolas-e-substitui-atual-leide- agrotoxicos.html>. Acesso em 05 de set. 2016. Britto, F.B., Vasco, A.N., Pereira, A.P.S., Méllo Júnior, A.V., Nogueira, L.C., 2012. Herbicidas no alto rio Poxim, Sergipe e os riscos de contaminação dos recursos hídricos. Rev. Ciênc. Agron. 43, 390-398. Buschmann, C., Litchtenthaler, H.K., 1998. Principles and characteristics of multicolour fluorescence imaging of plants. J. Plant Physiol. 152, 297-314. Caron, B.O., Perrando, E.R., Schmidt, D., Manfron, P.A., Behling, A., Elli, E.F., Eloy, E., 2014. Relações fisiológicas em mudas de pata-de-vaca (Bauhinia forticata Link). Rev. Bras. Plant. Med. 16, 196-201. Christou, A., Manganaris, G.A., Fotopoulos, V., 2014. Systemic mitigation of salt stress by hydrogen peroxide and sodium nitroprusside in strawberry plants via transcriptional regulation of enzymatic and non-enzymatic antioxidants. Environ. Exp. Bot. 107, 46-54. Conab – Companhia Nacional de Abastecimento, 2015. Acompanhamento da safra brasileira, safra 2015/16 – Terceiro Levantamento, 2, 1-65. Corrêa, M.J.P., Alves, P.L.C.A., 2010. Efeitos da aplicação de herbicidas sobre a eficiência fotoquímica em plantas de soja convencional e geneticamente modificada. Ciênc. Agrotec. 34, 1136-1145. 26 Dayan, F.E., Zaccaro, M.L.M., 2012. Chlorophyll fluorescence as a marker for herbicide mechanisms of action. Pestic. Biochem. Physiol. 102, 189-197. Demmig, B., Winter, K., Krüger, A., Czygan, F.C., 1987. Photoinhibition and zeaxanthin formation in intact leaves: A possible role of the xanthophyll cycle in the dissipation of excess light energy – Commentary. Plant Physiology 84, 218-224. Anjos, L., Oliva, M.A., Kuki, K.N., 2012. Fluorescence imaging of light acclimation of Brazilian atlantic forest tree species. Photosynthetica 50, 95-108. Dupraz, V., Coquillé, N., Ménard, D., Sussarellu, R., Haugarreau, L., Stachowski- Haberkorn, S., 2016. Microalgal sensitivity varies between a diuron-resistant strain and two wild strains when exposed to diuron and irgarol, alone and in mixtures. Chemosphere 151, 241-252. Egan, J. F., Bohnenblust, E., Goslee, S., Mortensen, D., Tooker, J., 2014. Herbicide drift can affect plant and arthropod communities. Agric. Ecosyst. Environ. 185, 77-87. El-Nahhal, Y., Hamdona, N., 2015. Phtytotoxicity of alachlor, bromacil and diuron as single or mixed herbicides applied to wheat, melon, and molokhia. Springer Plus 4, 1- 19. Fayez, K.A., Radwan, D.E.M., Mohamed, A.K., Abdelrahman, A.M., 2014. Fusilade herbicide causes alterations in chloroplast ultrastructure, pigment content and physiological activities of peanut leaves. Photosynthetica 52, 548-554. Fufezan, C., Rutherford, A.W., Krieger-Liszkay, A., 2002. Singlet oxygen production in herbicide-treated photosystem II. Fed. Eur. Biochem. Soc. Lett. 532, 407-410. Galvani, J., Rizzardi, M.A., Carneiro, C.M., Bianchi, M.A., 2012. Anatomia foliar de Lolium multiflorum sensível e resistente ao glyphosate. Planta Daninha 30, 407-413. Genty, B., Briantais, J.M., Baker, N.R., 1989. The relationship between the quantum yield of photosynthetic electron transport and quenching of chlorophyll fluorescence. Biochim. Biophys. Acta 990, 87-92. Girotto, M., Araldi, R., Velini, E.D., Trindade, M.L.B., Carbonari, C.A., 2012. Efeito do hexazinone isolado e em mistura na eficiência fotossintética de Panicum maximum. Planta Daninha 30, 341-347. Goltsev, V., Genkov, T., Lexa, M., Ivanova, I., 2001. Effects of benzyladenine, 4-PU- 30 and thidiazuron on millisecond delayed and prompt chlorophyll fluorescence of Dianthus caryophyllus L. axillary buds cultured in vitro. Sci. Hortic. 89, 41-54. Gouret, E., Rohr, R., Chamel, A., 1993. Ultrastructure and chemical composition of some isolates plant cuticles in relation to their permeability to the herbicide, diuron. New Phytol. 124, 423-431. Guidi, L., Degl’Innocenti, E., 2011. Imaging of chlorophyll a fluorescence: A tool to study abiotic stress in plants. In: Sahnker, A., Abiotic stress in plants - mechanisms and adaptations. Ed. Tech Janeza Trdine: Rijeka, Croatia, pp. 3-20. 27 Guirao, L.M., Ruiz, J.M., Gil, J.M.S., Esteller, J.B., Stinco, C.M., Martínez, M.A., 2013. Xanthophyll cycle-related photoprotective mechanism in the Mediterranean seagrasses Posidonia oceanica and Cymodocea nodosa under normal and stressful hypersaline conditions. Aquat. Bot. 109, 14-24. Hajri, H., Mhadhebi, R., Ghorbel, A., Armstrong, J., Salem-Fnayou, A.B., 2016. Physiological and leaf ultrastructural characteristics of perennial ryegrass (Lolium perenne L.) biotypes from Tunisia under sulfonylurea herbicide application. Sci. Hortic. 207, 28-32. Hart, H., Hart, D.J., Craine, L.E., 1995. Química Orgânica, Mc Graw-Hill. Hess, F.D., Falk, R.H., 1990. Herbicide deposition on leaf surfaces. Weed Sci. 38, 280- 288. Holmes, G., 2014. Australia’s pesticide environmental risk assessment failure: The case of diuron and sugarcane. Mar. Pollut. Bull. 88, 7-13. Islam, F., Ali, B., Wang, J., Farooq, M.A., Gill, R.A., Ali, S., Wang, D., Zhou, W., 2016. Combined herbicide and saline stress differentially modulates hormonal regulation and antioxidante defense system in Oryza sativa cultivars. Plant Physiol. Biochem. 107, 82-95. Johansen, D.A., 1940. Plant microtechnique. McGraw Hill Book Company. Karnovsky, M.J.A., 1965. Formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolarity for use in electron microscopy. J. Cell Biol. 27, 137-138. Karthikeyan, R., Davis, L.C., Erickson, L.E., Al-Khatib, K., Kulakow, P.A., Barnes, P.L., Hutchinson, S.L., Nurzhanova, A.A. Studies on responses of non-target plants to pesticides: A review. Disponível em <https://www.engg.ksu.edu/HSRC/karthipesticide.pdf>. Acesso em 13 de jan. 2015. Kumar, K.S., Dahms, H-U., Lee, J-S., Kim, H.C., Lee, W.C., Shin, K-H., 2014. Algal photosynthetic responses to toxic metals and herbicides assessed by chlorophyll a fluorescence. Ecotoxicol. Environ. Saf. 104, 51–71. Laisk, A., Loreto, F., 1996. Determining photosynthetic parameters from leaf CO2 exchange and chlorophyll fluorescence. Plant Physiol. 110, 903-911. Lichtenthaler, H.K., Miehé, J.A., 1997. Fluorescence imaging as a diagnostic tool for plant stress. Trends Plant Sci. 2, 316-320. Lusa, M.G., Bona, C., 2009. Análise morfoanatômica comparativa da folha de Bauhinia forticata Link e B. variegata Linn. (Leguminosae, Caesalpinioideae). Acta Bot. Bras. 23, 196-211. Magnucka, E.G., Pietr, S., Kozubek, A., Zarnowski, R., 2014. Various effects of the photosystem II – inhibiting herbicides on 5-n-alkylresorcinol accumulation in rye seedlings. Pestic. Biochem. Physiol. 116, 56-62. Mahakhode, R.H., Somkuwar, S.R., 2012. Effect of spray application of herbicide gramoxone on morphoanatomical characters of weed Psoralea corylifolia L. Int. J. Curr. Pharm. Res. 4, 64-66. 28 Malpassi, R.N., 2006. Herbicide effects on cuticle ultrastructure in Eleusine indica and Portulaca oleracea. Biocell 30, 51-56. Martinelli-Senem, A., Possamai, E., Schuta, L.R., Vanzolini, S., 2006. Germinação e sanidade de sementes de Bauhinia variegata. Rev. Árvore 30, 719-724. Monquero, P.A., Christoffoleti, P.J., Matas, J.A., Heredia, A., 2004. Leaf surface characterization and epicuticular wax composition in Commelina benghalensis, Ipomoea grandifolia and Amaranthus hybridus. Planta Daninha 22, 203-210. Moskova, I., Todorova, D., Alexieva, V., Sergiev, I., 2011. Leaf morphology and histology changes of pea plants treated with hydrogen peroxide and paraquat. C. R. Acad. Bulg. Sci. 64, 1695-1700. Niyogi, K.K., Björkman, O., Grossman, A.R., 1997. The roles of specific xanthophylls in photoprotection. Proc. Natl. Acad. Sci. 94, 14162-14167. O'brien, T.P., Feder, N., Mccully, M.E., 1964. Polychromatic staining of plant cell walls by toluidine blue. Protoplasma 59, 368-373. Oswalt, J.S., Rieff, J.M., Severino, L.S., Auld, D.L., Bednarz, C.W., Ritchie, G.L., 2014. Plant height and seed yield of castor (Ricinus communis L.) sprayed with growth retardants and harvest aid chemicals. Ind. Crops Prod. 61, 272-277. Oturan, N., Trajkovska, S., Oturan, M.A., Couderchet, M., Aaron, J.J., 2008. Study of the toxicity of diuron and its metabolites formed in aqueous medium during application of the electrochemical advanced oxidation process “electro-Fenton”. Chemosphere 73, 1550-1556. Paiva, J.G.A., Fank-de-Carvalho, S.M., Magalhaes, M.P., Graciano-Ribeiro, D., 2006. Verniz vitral incolor 500®: uma alternativa de meio de montagem. Acta Bot. Bras. 20, 257-264. Rai, P.K., 2016. Impacts of particulate matter pollution on plants: Implications for environmental biomonitoring. Ecotoxicol. Environ. Saf. 129, 120-136. Reddy, M.V.B., Reddy, M.K., Gunasekar, D., Caux, C., Bodo, B., 2003. A flavanone and a dihydrodibenzoxepin from Bauhinia variegata. Phytochemistry 64, 879-882. Robards, A.W., 1978. An introduction to techniques for scanning electron microscopy of plant cells. Electron Microsc. Cytochem. Plant Cells 343-403. Rocha, P.R.R., Faria, A.T., Silva, G.S., Queiroz, M.E.L.R., Guimarães, F.C.N., Tironi, S.P., Galon, L., Silva, A.A., 2013. Meia-vida do diuron em solos com diferentes atributos físicos e químicos. Ciênc. Rural 43, 1961-1966. Rosolen, V., De-Campos, A.B., Govone, J.S., Rocha, C., 2015. Contamination of wetland soils and floodplain sediments from agricultural activities in the Cerrado Biome (State of Minas Gerais, Brazil). Catena 128, 203-210. Sadler, C., Schroll, B., Zeisler, V., Waßmann, F., Franke, R., Schreiber, L., 2016. Wax and cutin mutants of Arabidopsis: Quantitative characterization of the cuticular transport barrier in relation to chemical composition. Biochim. Biophys. Acta 1861, 1336-44. Sandoval-Carrasco, C.A., Ahuatzi-Chacón, D., Galíndez-Mayer, J., Ruiz-Ordaz, N., Juárez-Ramírez, C., Martínez-Jerónimo, F., 2013. Biodegradation of a mixture of the herbicides ametryn and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) in a compartmentalized biofilm reactor. Bioresour. Technol. 145, 33-36. Schmitz, J., Hahn, M., Brühl, C.A., 2014. Agrochemicals in field margins – An experimental field study to assess the impacts of pesticides and fertilizers on a natural plant community. Agric. Ecosyst. Environ. 193, 60-69. Spadotto, C.A., 2006. Abordagem interdisciplinar na avaliação ambiental de agrotóxicos. Revista Núcleo de Pesquisa Interdisciplinar. [online] Disponível em: <http://www.fmr.edu.br/npi_2.php>. Acesso em 05 de abril de 2016.pt_BR
dc.rightsAcesso Abertopt_BR
dc.subjectCerradopt_BR
dc.subjectBiomonitoramentopt_BR
dc.subjectInjúria visívelpt_BR
dc.subjectFluorescência da clorofila apt_BR
dc.subjectFotossíntesept_BR
dc.subject.cnpqCIENCIAS AGRARIAS::AGRONOMIA::FITOSSANIDADEpt_BR
dc.titleALTERAÇÕES MORFOANATÔMICAS E FISIOLÓGICAS EM PLANTAS NÃO ALVO DE Bauhinia variegata L. COMO INDICADORAS DA AÇÃO DO HERBICIDA DIUROMpt_BR
dc.title.alternativeMorpho-anatomical and physiological changes in nontarget plants of Bauhinia variegata L. as indicators of the herbicide diuron actionpt_BR
dc.typeDissertaçãopt_BR
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